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				<journal-title>Abanico veterinario</journal-title>
				<abbrev-journal-title abbrev-type="publisher">Abanico vet</abbrev-journal-title>
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			<issn pub-type="ppub">2007-428X</issn>
			<issn pub-type="epub">2448-6132</issn>
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				<publisher-name>Sergio Martínez González</publisher-name>
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			<article-id pub-id-type="doi">10.21929/abavet2020.17</article-id>
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					<subject>Artículos originales</subject>
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				<article-title>Acetato de deslorelina y gonadotropina coriónica humana y su respuesta ovulatoria en yeguas postparto</article-title>
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				<label>1</label>
				<institution content-type="original">Departamento de Veterinaria y Zootecnia, División de Ciencias de la Vida, Campus Irapuato-Salamanca, Universidad de Guanajuato, km 9 carretera Irapuato-Silao, Exhacienda El Copal, Irapuato, Guanajuato. 36824.</institution>
				<institution content-type="normalized">Universidad de Guanajuato</institution>
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				<label>2</label>
				<institution content-type="original">Colegio de Postgraduados, Campus Tabasco. Periférico Carlos A. Molina, km 3 carretera Cárdenas-Huimanguillo, Tabasco, México. 86500. </institution>
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			</aff>
			<author-notes>
				<corresp id="c1">*Autor de correspondencia y responsable de la investigación: José Antonio Hernández Marín. Departamento de Veterinaria y Zootecnia. División de Ciencias de la Vida. Campus Irapuato-Salamanca. Universidad de Guanajuato. ExHacienda el Copal km 9, carretera Irapuato-Silao, Irapuato, Guanajuato, México. C.P. 36824. <email>jahmarin@ugto.mx</email>
				</corresp>
			</author-notes>
			<pub-date date-type="pub" publication-format="electronic">
				<day>28</day>
				<month>02</month>
				<year>2021</year>
			</pub-date>
			<pub-date date-type="collection" publication-format="electronic">
				<season>Jan-Dec</season>
				<year>2020</year>
			</pub-date>
			<volume>10</volume>			
			<elocation-id>e111</elocation-id>
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				<date date-type="received">
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				<date date-type="accepted">
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					<year>2020</year>
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				<license license-type="open-access" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/" xml:lang="es">
					<license-p>Este es un artículo publicado en acceso abierto bajo una licencia Creative Commons</license-p>
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			<abstract>
				<title>Resumen</title>
				<p>Con la finalidad de evaluar la tasa de crecimiento folicular, el tiempo de respuesta a la ovulación y el porcentaje de ovulación en yeguas postparto Cuarto de Milla se aplicaron dos tratamientos (T), el primero con acetato de deslorelina (AD) y el segundo con gonadotropina coriónica humana (hCG). El estudio se realizó durante enero a junio de 2018, con dieciséis yeguas de 7 años, 450 kg de peso y 4.5 partos en promedio. El diámetro folicular ovárico se evaluó mediante ultrasonografía transrectal a tiempo real en respuesta a los tratamientos experimentales, en yeguas con folículos ováricos ≥ 35 mm de diámetro: T1 (n= 8): Aplicación de 1 mg de AD vía intramuscular (IM), y T2 (n= 8): Aplicación de 2500 UI de hCG vía IM. No hubo diferencias (<italic>P</italic> &gt; 0.05) en la tasa de crecimiento folicular (AD: 0.48±0.006 mm y hCG: 0.45±0.035 mm), el tiempo de respuesta a la ovulación (AD: 46.75±0.48 h y hCG: 56.00±8.00 h) y el porcentaje de ovulación (AD: 8/8, 100% y hCG: 7/8, 87.5%) en las yeguas postparto evaluadas. Se concluye que los tratamientos hormonales con acetato de deslorelina y la gonadotropina coriónica humana responden en la actividad ovárica en yeguas postparto Cuarto de Milla con folículos ováricos ≥ 35 mm de diámetro. </p>
			</abstract>
			<kwd-group xml:lang="es">
				<title>Palabras clave:</title>
				<kwd>Análogo de GnRH</kwd>
				<kwd>hCG</kwd>
				<kwd>reproducción en equinos</kwd>
				<kwd>ovulación</kwd>
				<kwd>foliculogénesis</kwd>
			</kwd-group>
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	<body>
		<sec sec-type="intro">
			<title>INTRODUCCIÓN</title>
			<p>La reproducción es considerada una de las fases más importantes en la vida de las yeguas, principalmente en aquellas que su fin zootécnico es ser reproductoras (<xref ref-type="bibr" rid="B5">Cortés- Vidauri <italic>et al</italic>., 2018</xref>). Dentro de la población gonadotropa, las células productoras de gonadotropinas localizadas en el <italic>par distal</italic> y en el <italic>par tuberalis</italic> de la hipófisis y la heterogeneidad en el patrón de almacenamiento de la hormona luteinizante (LH) y de la hormona foliculoestimulante (FSH), se considera la base para la regulación diferencial de la secreción de gonadotropinas durante el ciclo reproductivo (<xref ref-type="bibr" rid="B2">Aurich, 2011</xref>). </p>
			<p>Aumentar la eficiencia reproductiva es lo más importante para tener mayor aprovechamiento e intensificación del ritmo de mejora genética de los animales. A causa del fotoperiodo, la incidencia de ovulaciones varía durante el año, lo cual limita la reproducción de la yegua; por lo que tratar con hormonoterapia desempeña una función primordial (<xref ref-type="bibr" rid="B8">Ferris <italic>et al</italic>., 2012</xref>). Entre los beneficios de la hormonoterapia, están: el aumento del periodo de ciclicidad durante el año, el aumento del número de ovulaciones, la posibilidad de que el ambiente uterino propicie el desarrollo embrionario, la inducción de parto, la ayuda en el tratamiento de infecciones uterinas y la contribución en la utilización de biotécnicas de congelación de embriones, la fertilización <italic>in vitro</italic> y la vitrificación de embriones (<xref ref-type="bibr" rid="B7">Faria y Gradela, 2010</xref>). </p>
			<p>La inducción de la ovulación se ha vuelto un método de rutina en reproducción equina, ya que la inseminación artificial y transferencia de embriones requieren una precisa predicción del tiempo de ovulación, lo cual avala el uso de fármacos (<xref ref-type="bibr" rid="B5">Cortés-Vidauri <italic>et al., 2018</italic></xref>). La gonadotropina coriónica humana (hCG), ha sido la primera hormona utilizada para inducir la ovulación en yeguas y es la más utilizada; sin embargo, el uso frecuente de esta hormona produce la formación de anticuerpos anti-hCG, con una subsecuente pérdida de la eficacia farmacológica (<xref ref-type="bibr" rid="B10">Figuereido <italic>et al.</italic>, 2011</xref>). El acetato de deslorelina (AD), es un fármaco creado como antagónico de la hormona liberadora de las gonadotropinas (GnRH), y tiene como ventaja que su uso repetido no disminuye su eficacia (<xref ref-type="bibr" rid="B8">Ferris <italic>et al</italic>., 2012</xref>). </p>
			<p>Los protocolos de manejo reproductivo con GnRH en yeguas anéstricas para inducir el estro y la ciclicidad, proporcionan evidencia de que hay ovulaciones múltiples en algunas hembras con tales regímenes de tratamiento. Al respecto, se ha reportado que aplicar acetato de deslorelina con al menos dos folículos con diámetros entre 20 a 24 mm, puede producir doble ovulación en yeguas (<xref ref-type="bibr" rid="B12">Nagao <italic>et al</italic>., 2012</xref>). Por lo anterior, el objetivo del presente estudio es evaluar la respuesta de los tratamientos hormonales con acetato de deslorelina y gonadotropina coriónica humana en la actividad ovárica en yeguas postparto Cuarto de Milla, con folículos ováricos ≥35 mm de diámetro. </p>
		</sec>
		<sec sec-type="materials|methods">
			<title>MATERIAL Y MÉTODOS</title>
			<p>Localización del área de estudio<italic>.</italic> El estudio se realizó durante enero a junio de 2018 en el Rancho “Mogotes”, localizado en Aldama, municipio de Irapuato, Guanajuato, México; localizada a 20°49'23.77&quot; de Latitud Norte y 101°19'33.80&quot; de Longitud Oeste, a una altitud de 1700 msnm, con clima cálido subhúmedo, temperatura media anual de 20.5°C y precipitación pluvial de 692 mm (<xref ref-type="bibr" rid="B11">INAFED, 2018</xref>). </p>
			<p>Animales experimentales y manejo<italic>.</italic> Se utilizaron dieciséis yeguas postparto de la raza Cuarto de Milla, clínicamente sanas, de 7 años, 450 kg de peso y 4.5 partos en promedio. Las yeguas se mantuvieron en condiciones de alimentación adecuada y con buena condición corporal, lo cual se requiere para el desempeño reproductivo apropiado; representado en ciclos estrales regulares y buena calidad de los folículos ováricos. El presente estudio se realizó de acuerdo con los estándares para el uso y cuidado de animales de investigación de acuerdo con las Normas Oficiales Mexicanas NOM-024 ZOO-1995 y la NOM-051-ZOO-1995 (NOM-024-ZOO-1995; NOM-051-ZOO-1995). </p>
			<p>Protocolo experimental y tratamientos<italic>.</italic> Se utilizó un diseño completo con tratamientos aleatorizados, en el cual las yeguas se asignaron al azar a uno de dos tratamientos (T, figura <xref ref-type="fig" rid="f1">1</xref>): T1 (n= 8): aplicación de 1 mg de acetato de deslorelina (AD; Sincrorrelin®, Lab. Ourofino) por yegua con crecimiento folicular ≥ 35 mm de diámetro; y T2 (n= 8): aplicación de 2500 UI de gonadotropina coriónica humana liofilizada (hCG; CHORULON®, Lab. Merk Sharp &amp; Dohme), por cada yegua con crecimiento folicular ≥ 35 mm de diámetro. Los tratamientos hormonales se aplicaron vía intramuscular con jeringas de 3 y 5 mL (Terumo®) y aguja hipodérmica 21G (32 mm), previa desinfección de la zona de aplicación con torundas de algodón humedecidas con alcohol. </p>
			<p>
				<fig id="f1">
					<label>Figura 1</label>
					<caption>
						<title>Protocolo de manejo reproductivo en yeguas Cuarto de Milla</title>
					</caption>
					<graphic xlink:href="2448-6132-av-10-e111-gf1.png"/>
				</fig>
			</p>
			<p>Evaluación de la actividad ovárica<italic>.</italic> Todas las yeguas se exploraron por ultrasonografía transrectal, a tiempo real con un transductor de 7.5 Mhz (CHISON ECO2, China); durante los 9 y 11 días postparto, conocido como “calor del potro”, para conseguir la preñez se realizó servicio con semen refrigerado por inseminación artificial (IA). El diámetro folicular ovárico se evaluó cada 24 h desde el inicio del estro postparto, hasta que se detectó la ovulación mediante la imagen anecogénica en el ovario por la presencia del cuerpo hemorrágico, posterior a la IA. Se consideró como diámetro del folículo dominante, la medida registrada en el día previo a la aparición del cuerpo lúteo. Al observar folículos ováricos mayores o iguales a 35 mm de diámetro, se aplicaron los tratamientos hormonales T1: AD y hCG. Se determinó la tasa de crecimiento folicular ovárico (mm), la respuesta a la ovulación (h) y el porcentaje de ovulación (%). </p>
			<p>Análisis estadístico<italic>.</italic> Los datos se analizaron con SAS (<xref ref-type="bibr" rid="B17">SAS Institute Inc, 2012</xref>). Para analizar los datos de la actividad ovárica, se realizó un análisis de varianza con medidas repetidas en el tiempo; se utilizó la prueba de Tukey para la comparación múltiple de medias (<italic>P</italic> &lt; 0.05). Para analizar el tiempo de respuesta a la ovulación, se utilizó la prueba de log Rank con el procedimiento LIFETEST, mediante las curvas de supervivencia, y para evaluar la respuesta de ovulación (porcentaje) se utilizó la prueba de <italic>x</italic>
 <sup>2</sup>. </p>
		</sec>
		<sec sec-type="results|discussion">
			<title>RESULTADOS Y DISCUSIÓN</title>
			<p>Desarrollo folicular ovárico<italic>.</italic> Las yeguas postparto Cuarto de Milla tratadas con AD y hCG presentaron desarrollo folicular ovárico similar (<italic>P</italic> &gt; 0.05), evaluado durante la fase experimental (<xref ref-type="table" rid="t1">cuadro 1</xref>). La tasa de crecimiento folicular ovárico fue similar (<italic>P</italic> &gt; 0.05) entre tratamientos (AD: 0.48 ± 0.006 y hCG: 0.45 ± 0.035). No se encontraron diferencias (<italic>P</italic> &gt; 0.05) en el tiempo de respuesta a la ovulación (<xref ref-type="fig" rid="f2">figura 2</xref>) y en el porcentaje de ovulación (<xref ref-type="table" rid="t2">cuadro 2</xref>). </p>
			<p>
				<fig id="f2">
					<label>Figura 2</label>
					<caption>
						<title>Curva de supervivencia para el tiempo de respuesta a la ovulación (h) en yeguas Cuarto de Milla, tratadas con acetato de deslorelina (T1) y gonadotropina coriónica humana (T2), HOVUL: Horas a la ovulación</title>
					</caption>
					<graphic xlink:href="2448-6132-av-10-e111-gf2.png"/>
				</fig>
			</p>
			<p>
				<table-wrap id="t1">
					<label>Cuadro 1</label>
					<caption>
						<title>Desarrollo folicular ovárico en yeguas postparto Cuarto de Milla tratadas con acetato de deslorelina y gonadotropina coriónica humana</title>
					</caption>
					<table>
						<colgroup>
							<col/>
							<col/>
							<col/>
							<col/>
							<col/>
							<col/>
						</colgroup>
						<tbody>
							<tr>
								<td align="center" rowspan="2">TRATAMIENTO (T) </td>								
								<td align="center" colspan="5">Diámetro folicular (cm)  </td>
								
							</tr>
							<tr>
								<td align="center">Día 5</td>
								<td align="center">Día 6</td>
								<td align="center">Día 7</td>
								<td align="center">Día 8</td>
								<td align="center">Día 9</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="center">T1 (n=8) </td>
								<td align="center">2.55 a </td>
								<td align="right">3.05 a </td>
								<td align="center">3.53 a </td>
								<td align="left">4.00 a </td>
								<td align="right">4.48 a </td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="center">Acetato de deslorelina </td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="right"> </td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="left"> </td>
								<td align="right"> </td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="center">T2 (n=8) </td>
								<td align="center">2.70 a </td>
								<td align="right">3.10 a </td>
								<td align="center">3.5 a </td>
								<td align="left">4.05 a </td>
								<td align="right">4.5 a </td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="center">Gonadotropina coriónica equina </td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="right"> </td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="left"> </td>
								<td align="right"> </td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="center">E.E.M. </td>
								<td align="center">0.18 </td>
								<td align="right">0.11 </td>
								<td align="center">0.05 </td>
								<td align="left">0.05 </td>
								<td align="right">0.08 </td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="center"><italic>P-value</italic></td>
								<td align="center">0.4358 </td>
								<td align="right">0.6704 </td>
								<td align="center">0.6202 </td>
								<td align="left">0.3559 </td>
								<td align="right">0.7502 </td>
							</tr>
						</tbody>
					</table>
					<table-wrap-foot>
						<fn id="TFN1">
							<p>a: Medias con literal similar en la misma columna son iguales (<italic>P</italic> &gt; 0.05).</p>
						</fn>
					</table-wrap-foot>
				</table-wrap>
			</p>
			<p>La administración de 1 mg de acetato de deslorelina vía IM al momento de identificar un folículo dominante de 38 a 40 mm de diámetro, redujo el tiempo de ovulación entre 24 y 48 h y por lo tanto, favoreció el número de servicios por concepción, en comparación con la respuesta del tratamiento con gonadotropina coriónica humana utilizada en el presente estudio. Lo anterior se puede explicar debido a que los porcentajes de concepción y de ovulación son de 55% y 60% respectivamente, después de 14 a 40 horas de aplicar las hormonas (<xref ref-type="bibr" rid="B10">Figuereido <italic>et al.</italic>, 2011</xref>). La ovulación en las yeguas Cuarto de Milla, en promedio ocurre con folículos de 40 mm de diámetro (<xref ref-type="bibr" rid="B16">Rodríguez <italic>et al</italic>., 2013</xref>). El momento óptimo para la aplicación de hCG, es cuando la yegua tiene un folículo dominante mayor o igual a 35 mm de diámetro, con una dosis de 3000 UI. La ovulación se presenta entre las 24 a 48 horas después de la aplicación (<xref ref-type="bibr" rid="B6">Dolezel <italic>et al</italic>., 2012</xref>). </p>
			<p>Respuesta a la ovulación<italic>.</italic> No se encontraron diferencias (<italic>P</italic> &gt; 0.05) en el tiempo de respuesta a la ovulación y en el porcentaje de ovulación (<xref ref-type="table" rid="t2">cuadro 2</xref>). </p>
			<p>
				<table-wrap id="t2">
					<label>Cuadro 2</label>
					<caption>
						<title>Respuesta a la ovulación en yeguas Cuarto de Milla, tratadas con acetato de deslorelina y gonadotropina coriónica humana</title>
					</caption>
					<table>
						<colgroup>
							<col/>
							<col/>
							<col/>
							<col/>
						</colgroup>
						<tbody>
							<tr>
								<td align="center">Tratamiento (T) </td>
								<td align="center">Tiempo de respuesta a la ovulación (h) </td>
								<td align="center">Ovulación (%) </td>
								<td align="center">Ovulación por ovario derecho (%) </td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="center">(T1, n=8) Acetato de deslorelina </td>
								<td align="center">46.75 ± 0.48 a </td>
								<td align="center">8/8 (100%) a </td>
								<td align="center">75.0 a </td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="center">(T2, n=8) </td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center"> </td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="center">Gonadotropina coriónica humana </td>
								<td align="center">56.00 ± 8.00 a </td>
								<td align="center">6/8 (87.5%) a </td>
								<td align="center">75.0 a </td>
							</tr>							
						</tbody>
					</table>
					<table-wrap-foot>
						<fn id="TFN2">
							<p>a: Medias con literal similar en la misma columna son iguales (<italic>P</italic> &gt; 0.05).</p>
						</fn>
					</table-wrap-foot>
				</table-wrap>
			</p>
			<p>Los resultados del presente estudio coinciden con los reportados por <xref ref-type="bibr" rid="B6">Dolezel <italic>et al</italic>. (2012)</xref>, quienes administraron vía intravenosa 3000 UI de hCG durante el estro en yeguas con un folículo dominante ≥ 35 mm de diámetro, y observaron que las ovulaciones ocurrieron entre 12 y 48 h después del tratamiento. Al respecto, es posible que el crecimiento del folículo dominante después de aplicar la dosis de hCG, haya sido influenciado por el tamaño de los folículos en el momento del tratamiento. <xref ref-type="bibr" rid="B9">Finan <italic>et al</italic>. (2016)</xref> encontraron que el 93.75% de las yeguas ovularon dentro de las 48 h después del tratamiento con deslorelina vía IM; a diferencia de <xref ref-type="bibr" rid="B4">Chávez <italic>et al</italic>. (2018)</xref>, quienes reportaron que el tiempo de ovulación fue de 43.13±4.48 h y 69.00±8.41 h para las yeguas tratadas con acetato de deslorelina y el tratamiento testigo, respectivamente. El 87.5% (7/8) de las yeguas tratadas con acetato de deslorelina ovularon dentro de las 48 h; mientras que sólo el 37.5% (3/8) para las del tratamiento testigo. Las diferencias observadas entre los estudios podrían deberse al tamaño de muestra experimental, o a un factor ambiental, nutricional o de raza (<xref ref-type="bibr" rid="B3">Boeta <italic>et al</italic>., 2006</xref>). La capacidad de inducir la ovulación en un momento predecible, ha aumentado la eficiencia de los programas de reproducción equina, donde los beneficios incluyen una disminución en el número de servicios por ciclo para sementales; lo que permite mayores registros de yeguas anualmente (<xref ref-type="bibr" rid="B9">Finan <italic>et al</italic>., 2016</xref>). </p>
			<p>Los protocolos de manejo reproductivo equino, estimulan la inducción de la ovulación para proporcionar una ovulación programada en yeguas, para un manejo óptimo de la reproducción. Al respecto, se han reportado numerosos estudios sobre la eficacia de prostaglandinas, GnRH, análogos de GnRH y hCG para inducir la ovulación en la yegua <xref ref-type="bibr" rid="B18">(Yoon, 2012)</xref>. Se ha reportado que el diámetro, la forma fluctuación del folículo dominante y el plegamiento endometrial, se pueden considerar para estimar la predicción de la ovulación; sin embargo, no son lo suficientemente precisos ni estándar (<xref ref-type="bibr" rid="B15">Ramírez <italic>et al.</italic>, 2010</xref>). Por lo tanto, es importante la inducción o sincronización hormonal de la ovulación, la cual favorece la determinación del momento óptimo para la inseminación. La administración de gonadotropina coriónica humana (hCG), representa el método de tratamiento más frecuente para este propósito (<xref ref-type="bibr" rid="B6">Dolezel <italic>et al</italic>., 2012</xref>). Por el contrario, la anovulación es una actividad fisiológica normal en la yegua durante la transición de la primavera al otoño; sin embargo, el desarrollo folicular anovulatorio ocurre ocasionalmente en la época reproductiva. Lo anterior, puede explicarse debido a que los folículos crecen entre 5 y 15 cm de diámetro y persisten hasta dos meses. Estos folículos producen comportamiento de estro anormal y prolongan el periodo interovulatorio (<xref ref-type="bibr" rid="B1">Ángel y Bran, 2010</xref>). </p>
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		<sec sec-type="conclusions">
			<title>CONCLUSIÓN</title>
			<p>Los tratamientos hormonales con acetato de deslorelina y gonadotropina coriónica humana, responden en la actividad ovárica en las yeguas postparto Cuarto de Milla con folículos ováricos ≥ 35 mm de diámetro; por lo tanto, los dos tratamientos hormonales son opciones viables para controlar el desarrollo folicular ovárico, e inducir la ovulación en yeguas postparto Cuarto de Milla en protocolos de manejo reproductivo.</p>
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			<title>LITERATURA CITADA </title>
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					<source>Revista de Medicina Veterinaria</source>
					<volume>19</volume>
					<fpage>21</fpage>
					<lpage>35</lpage>
					<ext-link ext-link-type="uri" xlink:href="http://www.scielo.org.co/pdf/rmv/n19/n19a03.pdf">http://www.scielo.org.co/pdf/rmv/n19/n19a03.pdf</ext-link>
				</element-citation>
			</ref>
			<ref id="B16">
				<mixed-citation>RODRÍGUEZ GA, Bazán GA, Rodríguez GJ, Espinoza BJ, Vásquez CM, Lucas LJ, Huanca LW. 2013. Evaluación del folículo ovárico de yeguas criollas postadministración de hCG. <italic>Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú</italic>. 24(2): 189-193. ISSN: 1609 -9117. <ext-link ext-link-type="uri" xlink:href="http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S160991172013000200008">http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S160991172013000200008</ext-link>
				</mixed-citation>
				<element-citation publication-type="journal">
					<person-group person-group-type="author">
						<name>
							<surname>RODRÍGUEZ</surname>
							<given-names>GA</given-names>
						</name>
						<name>
							<surname>Bazán</surname>
							<given-names>GA</given-names>
						</name>
						<name>
							<surname>Rodríguez</surname>
							<given-names>GJ</given-names>
						</name>
						<name>
							<surname>Espinoza</surname>
							<given-names>BJ</given-names>
						</name>
						<name>
							<surname>Vásquez</surname>
							<given-names>CM</given-names>
						</name>
						<name>
							<surname>Lucas</surname>
							<given-names>LJ</given-names>
						</name>
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							<surname>Huanca</surname>
							<given-names>LW</given-names>
						</name>
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					<year>2013</year>
					<article-title>Evaluación del folículo ovárico de yeguas criollas postadministración de hCG</article-title>
					<source>Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú</source>
					<volume>24</volume>
					<issue>2</issue>
					<fpage>189</fpage>
					<lpage>193</lpage>
					<issn>1609 -9117</issn>
					<ext-link ext-link-type="uri" xlink:href="http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S160991172013000200008">http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S160991172013000200008</ext-link>
				</element-citation>
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			<ref id="B17">
				<mixed-citation>SAS Institute. 2012. Statistical Analysis Software SAS/STAT®. version 9.0.2, Cary, N.C., USA: SAS Institute Inc., ISBN: 978-1-60764-599-3. <ext-link ext-link-type="uri" xlink:href="http://www.sas.com/en_us/software/analytics/stat.html#">http://www.sas.com/en_us/software/analytics/stat.html#</ext-link>
				</mixed-citation>
				<element-citation publication-type="book">
					<person-group person-group-type="author">
						<collab>SAS Institute</collab>
					</person-group>
					<year>2012</year>
					<source>Statistical Analysis Software SAS/STAT®</source>
					<version>9.0.2</version>
					<publisher-loc>Cary, N.C., USA</publisher-loc>
					<publisher-name>SAS Institute Inc.</publisher-name>
					<isbn>978-1-60764-599-3</isbn>
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			<ref id="B18">
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				<element-citation publication-type="journal">
					<person-group person-group-type="author">
						<name>
							<surname>YOON</surname>
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					</person-group>
					<year>2012</year>
					<article-title>The estrous cycle and induction of ovulation in mares</article-title>
					<source>Journal of Animal Science and Technology</source>
					<volume>54</volume>
					<issue>3</issue>
					<fpage>165</fpage>
					<lpage>174</lpage>
					<pub-id pub-id-type="doi">10.5187/JAST.2012.54.3.165</pub-id>
				</element-citation>
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		</ref-list>
	</back>
	<sub-article article-type="translation" id="s1" xml:lang="en">
		<front-stub>
			<article-categories>
				<subj-group subj-group-type="heading">
					<subject>Original Article</subject>
				</subj-group>
			</article-categories>
			<title-group>
				<article-title>Deslorelin acetate and human corionic gonadotropine and its ovulatory response in postpartum mares</article-title>
			</title-group>
			<abstract>
				<title>Abstract</title>
				<p>In order to evaluate the rate of follicular growth, the response time to ovulation and the percentage of ovulation in Quarter Mile postpartum mares, two treatments (T) were applied, the first with deslorelin acetate (DA) and the second with human chorionic gonadotropin (hCG). The study was conducted during January to June 2018, with sixteen 7-year-old mares, 450 kg of weight and 4.5 deliveries on average. Ovarian follicular diameter was evaluated by real-time transrectal ultrasonography in response to experimental treatments, in mares with ovarian follicles ≥ 35 mm in diameter: T1 (n= 8): Application of 1 mg of DA intramuscularly (IM), and T2 (n= 8): Application of 2500 IU of hCG via IM. There were no differences (<italic>P</italic>&gt; 0.05) in the rate of follicular growth (AD: 0.48 ± 0.006 mm and hCG: 0.45 ± 0.035 mm), the time of response to ovulation (AD: 46.75 ± 0.48 h and hCG: 56.00 ± 8.00 h) and the percentage of ovulation (AD: 8/8, 100% and hCG: 7/8, 87.5%) in the postpartum mares evaluated. It is concluded that deslorelin acetate and human chorionic gonadotropin respond to ovarian activity in Quarter Mile postpartum mares with ovarian follicles ≥ 35 mm in diameter. </p>
			</abstract>
			<kwd-group xml:lang="en">
				<title>Keywords:</title>
				<kwd>GnRH analogue</kwd>
				<kwd>hCG</kwd>
				<kwd>equine reproduction</kwd>
				<kwd>ovulation</kwd>
				<kwd>folliculogenesis</kwd>
			</kwd-group>
		</front-stub>
		<body>
			<sec sec-type="intro">
				<title>INTRODUCTION</title>
				<p>Reproduction is considered one of the most important phases in the life of mares, mainly in those whose zootechnical purpose is to be reproductive (<xref ref-type="bibr" rid="B5">Cortés-Vidauri <italic>et al</italic>., 2018</xref>). Within the gonadotropic population, gonadotropin-producing cells located in the <italic>º</italic> pair and in the <italic>tuberalis</italic> pair of the pituitary and heterogeneity in the storage pattern of luteinizing hormone (LH) and follicle-stimulating hormone (FSH) are considered the basis for the differential regulation of gonadotropin secretion during the reproductive cycle (<xref ref-type="bibr" rid="B2">Aurich, 2011</xref>). </p>
				<p>Increasing reproductive efficiency is the most important thing to have better use and intensification of the rate of genetic improvement of animals. Due to the photoperiod, the incidence of ovulations varies throughout the year, which limits the mare's reproduction; therefore, treating with hormone therapy plays a fundamental role (<xref ref-type="bibr" rid="B8">Ferris <italic>et al</italic>., 2012</xref>). Among the benefits of hormone therapy are an increase in the cycle period during the year, an increase in the number of ovulations, the possibility that the uterine environment favors embryonic development. Induction of labor, help in the treatment of uterine infections, and the contribution in the use of embryo freezing biotechnologies, <italic>in vitro</italic> fertilization and embryo vitrification (<xref ref-type="bibr" rid="B7">Faria and Gradela, 2010</xref>). also can be mentioned. </p>
				<p>Ovulation induction has become a routine method in equine reproduction, since artificial insemination and embryo transfer require an accurate prediction of ovulation time, which supports the use of drugs (<xref ref-type="bibr" rid="B5">Cortés-Vidauri <italic>et al</italic>., 2018</xref>). Human chorionic gonadotropin (hCG) has been the first hormone used to induce ovulation in mares and is the most widely used; however, the frequent use of this hormone produces the formation of anti-hCG antibodies, with a subsequent loss of pharmacological efficacy (<xref ref-type="bibr" rid="B10">Figuereido <italic>et al.</italic>, 2011</xref>).. Deslorelin Acetate (AD) is a drug created as an antagonist of the gonadotropin-releasing hormone (GnRH), and has the advantage that its repeated use does not decrease its effectiveness (<xref ref-type="bibr" rid="B8">Ferris <italic>et al</italic>., 2012</xref>). </p>
				<p>Reproductive management protocols with GnRH in annestric mares to induce estrus and cyclicity provide evidence that there are multiple ovulations in some females with such treatment regimens. In this regard, applying deslorelin acetate with at least two follicles with diameters between 20 to 24 mm has been reported that could produce double ovulation in mares (<xref ref-type="bibr" rid="B12">Nagao <italic>et al</italic>., 2012</xref>). Therefore, the objective of this study is to evaluate the response of hormonal treatments with deslorelin acetate and human chorionic gonadotropin in ovarian activity in postpartum Quarter Mile mares, with ovarian follicles ≥35 mm in diameter. </p>
			</sec>
			<sec sec-type="materials|methods">
				<title>MATERIAL AND METHODS</title>
				<p>Location of area of study. The study was from January to June 2018 carried ou,t at the Rancho &quot;Mogotes&quot;, located in Aldama, Irapuato municipality, Guanajuato, Mexico. It is located at 20 ° 49' 23.77 &quot; North Latitude and 101° 19' 33.80&quot; West Longitude, at an altitude of 1700 meters above sea level, with a warm sub-humid climate, an average annual temperature of 20.5 °C and a rainfall of 692 mm (<xref ref-type="bibr" rid="B11">INAFED, 2018</xref>). </p>
				<p>Experimental animals and management. Sixteen postpartum mares of the Quarter Mile breed, clinically healthy, 7 years old, weighing 450 kg and 4.5 calving on average, were used. The mares were kept in adequate feeding conditions and in good body condition, which is required for proper reproductive performance; represented in regular estrous cycles and good quality of the ovarian follicles. The present study was carried out in accordance with the standards for the use and care of research animals in accordance with the Official Mexican Standards NOM-024-ZOO-1995 and NOM-051-ZOO-1995 (NOM-024-ZOO-1995; NOM-051-ZOO-1995). </p>
				<p>Experimental protocol and treatments. A complete design with randomized treatments was used. The mares were randomly assigned to one of two treatments (T, <xref ref-type="fig" rid="f3">figure 1</xref>): T1 (n = 8) consisted on the application of 1 mg of deslorelin acetate (AD; Sincrorrelin<sup>®</sup>, Lab. Ourofino) per mare with follicular growth ≥ 35 mm in diameter. The T2 (n = 8): consisted on the application of 2500 IU of lyophilized human chorionic gonadotropin (hCG; CHORULON<sup>®</sup>, Lab. Merk Sharp &amp; Dohme), for each mare with follicular growth ≥ 35 mm in diameter. Hormonal treatments were applied intramuscularly with 3 and 5 mL syringes (Terumo<sup>®</sup>) and a 21G (32 mm) hypodermic needle, after disinfecting the application area with cotton swabs moistened with alcohol. </p>
				<p>
					<fig id="f3">
						<label>Figure 1</label>
						<caption>
							<title>Reproductive management protocol in Quarter Mile mares</title>
						</caption>
						<graphic xlink:href="2448-6132-av-10-e111-gf3.png"/>
					</fig>
				</p>
				<p>Evaluation of ovarian activity. All mares were explored by transrectal ultrasonography, in real time with a 7.5 Mhz transducer (CHISON ECO2, China); During the 9 and 11 days postpartum, known as &quot;heat of the foal&quot;, to achieve pregnancy, a service was performed with semen refrigerated by artificial insemination (AI). Ovarian follicular diameter was evaluated every 24 h from the start of postpartum oestrus, until ovulation was detected by anechogenic imaging in the ovary due to the presence of the hemorrhagic body, after AI. The diameter of the dominant follicle was considered the measurement recorded on the day prior to the appearance of the corpus luteum. When observing ovarian follicles greater than or equal to 35 mm in diameter, the hormonal treatments T1: AD and hCG were applied. The ovarian follicular growth rate (mm), the response to ovulation (h) and the percentage of ovulation (%) were determined. </p>
				<p>Statistical analysis. The data was analyzed with SAS (SAS Institute Inc, 2012). To analyze the ovarian activity data, an analysis of variance with repeated measures over time was performed; Tukey's test was used for multiple comparison of means (P &lt;0.05). To analyze the response time to ovulation, the log rank test was used with the LIFETEST procedure, using the survival curves, and the <italic>x</italic>
 <sup>2</sup> test was used to assess the ovulation response (percentage). </p>
			</sec>
			<sec sec-type="results|discussion">
				<title>RESULTS AND DISCUSSION</title>
				<p>Ovarian follicular development. The Quarter Mile postpartum mares treated with AD and hCG presented similar ovarian follicular development (P&gt; 0.05), evaluated during the experimental phase (<xref ref-type="table" rid="t3">Table 1</xref>). The ovarian follicular growth rate was similar (P&gt; 0.05) between treatments (AD: 0.48 ± 0.006 and hCG: 0.45 ± 0.035). No differences were found (P&gt; 0.05) in the response time to ovulation (<xref ref-type="fig" rid="f4">Figure 2</xref>) and in the percentage of ovulation (<xref ref-type="table" rid="t4">Table 2</xref>). </p>
				<p>
					<table-wrap id="t3">
						<label>Table 1</label>
						<caption>
							<title>Ovarian follicular development in Quarter Mile postpartum mares treated with deslorelin acetate and human chorionic gonadotropin</title>
						</caption>
						<table>
							<colgroup>
								<col/>
								<col/>
								<col/>
								<col/>
								<col/>
								<col/>
							</colgroup>
							<tbody>
								<tr>
									<td align="center" rowspan="2">TREATMENT (T) </td>
									
									<td align="center" colspan="5">Follicular diameter (cm)</td>
									
								</tr>
								<tr>
									<td align="center">Day 5</td>
									<td align="center">Day 6</td>
									<td align="center">Day 7</td>
									<td align="center">Day 8</td>
									<td align="center">Day 9</td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="center">T1 (n=8) </td>
									<td align="center">2.55 a </td>
									<td align="right">3.05 a </td>
									<td align="center">3.53 a </td>
									<td align="left">4.00 a </td>
									<td align="right">4.48 a </td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="center">Deslorelin Acetate </td>
									<td align="center"> </td>
									<td align="right"> </td>
									<td align="center"> </td>
									<td align="left"> </td>
									<td align="right"> </td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="center">T2 (n=8) </td>
									<td align="center">2.70 a </td>
									<td align="right">3.10 a </td>
									<td align="center">3.5 a </td>
									<td align="left">4.05 a </td>
									<td align="right">4.5 a </td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="center">Equine chorionic gonadotropin </td>
									<td align="center"> </td>
									<td align="right"> </td>
									<td align="center"> </td>
									<td align="left"> </td>
									<td align="right"> </td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="center">E.E.M. </td>
									<td align="center">0.18 </td>
									<td align="right">0.11 </td>
									<td align="center">0.05 </td>
									<td align="left">0.05 </td>
									<td align="right">0.08 </td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="center"><italic>P-value</italic></td>
									<td align="center">0.4358 </td>
									<td align="right">0.6704 </td>
									<td align="center">0.6202 </td>
									<td align="left">0.3559 </td>
									<td align="right">0.7502 </td>
								</tr>
							</tbody>
						</table>
						<table-wrap-foot>
							<fn id="TFN3">
								<p>a: Means with a similar literal in the same column are the same (P&gt; 0.05</p>
							</fn>
						</table-wrap-foot>
					</table-wrap>
				</p>
				<p>The administration of 1 mg of deslorelin acetate via IM when identifying a dominant follicle of 38 to 40 mm in diameter, reduced the ovulation time between 24 and 48 h and; therefore, it favored the number of services per conception, compared to the response of treatment with human chorionic gonadotropin used in the present study. This can be because the percentages of conception explained and ovulation are 55% and 60%, respectively, after 14 to 40 hours of applying the hormones (<xref ref-type="bibr" rid="B10">Figuereido <italic>et al.</italic>, 2011</xref>) . Ovulation in Quarter Mile mares, on average, occurs with follicles 40 mm in diameter (<xref ref-type="bibr" rid="B16">Rodríguez <italic>et al</italic>., 2013</xref>). The optimal time for the application of hCG is when the mare has a dominant follicle greater than or equal to 35 mm in diameter, with a dose of 3000 IU. Ovulation occurs between 24 to 48 hours after application (<xref ref-type="bibr" rid="B6">Dolezel <italic>et al</italic>., 2012</xref>) . </p>
				<p>
					<fig id="f4">
						<label>Figure 2</label>
						<caption>
							<title>Survival curve for ovulation response time (h) in Quarter Mile mares, treated with deslorelin acetate (T1) and human chorionic gonadotropin (T2), HOVUL: Hours to ovulation</title>
						</caption>
						<graphic xlink:href="2448-6132-av-10-e111-gf4.png"/>
					</fig>
				</p>
				<p>Response to ovulation. No differences were found (P&gt; 0.05) in the response time to ovulation and in the percentage of ovulation (<xref ref-type="table" rid="t4">Table 2</xref>). </p>
				<p>
					<table-wrap id="t4">
						<label>Table 2</label>
						<caption>
							<title>Response to ovulation in Quarter mile mares treated with deslorelin acetate and human chorionic gonadotropin</title>
						</caption>
						<table>
							<colgroup>
								<col/>
								<col/>
								<col/>
								<col/>
							</colgroup>
							<tbody>
								<tr>
									<td align="left">Treatment (T) </td>
									<td align="center">Ovulation response time (h) </td>
									<td align="center">Ovulation (%) </td>
									<td align="center">Ovulation by right ovary (%) </td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="center">
										<p>(T1, n=8)</p>
										<p>Deslorelin acetate</p>
									</td>
									<td align="center">46.75 ± 0.48 a </td>
									<td align="center">8/8 (100%) a </td>
									<td align="center">75.0 a </td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="center">(T2, n=8)</td>
									<td align="center"> </td>
									<td align="center"> </td>
									<td align="center"> </td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="center">
										<p>Human Chorionic</p>
										<p>Gonadotropin</p>
									</td>
									<td align="center">56.00 ± 8.00 a </td>
									<td align="center">6/8 (87.5%) a </td>
									<td align="center">75.0 a </td>
								</tr>
								
							</tbody>
						</table>
						<table-wrap-foot>
							<fn id="TFN4">
								<p>a: Means with a similar literal in the same column are the same (P&gt; 0.05).</p>
							</fn>
						</table-wrap-foot>
					</table-wrap>
				</p>
				<p>The results of the present study coincide with those reported by <xref ref-type="bibr" rid="B6">Dolezel <italic>et al</italic>. (2012)</xref>, who administered intravenously 3000 IU hCG during estrus in mares with a dominant follicle ≥ 35 mm in diameter, and observed that ovulations occurred between 12 and 48 h after treatment. In this regard, it is possible that the growth of the dominant follicle after applying the hCG dose was influenced by the size of the follicles at the time of treatment. <xref ref-type="bibr" rid="B9"><italic>Finan et al. (2016)</italic></xref> found that 93.75% of the mares ovulated within 48 h after treatment with deslorelin via IM; unlike <xref ref-type="bibr" rid="B4">Chávez <italic>et al</italic>. (2018)</xref>, who reported that the ovulation time was 43.13 ± 4.48 h and 69.00 ± 8.41 h for the mares treated with deslorelin acetate and the control treatment, respectively. 87.5% (7/8) of the mares treated with deslorelin acetate ovulated within 48 h; while only 37.5% (3/8) for those of the control treatment. </p>
				<p>The differences observed between the studies could be due to the experimental sample size, or to an environmental, nutritional or race factor (<xref ref-type="bibr" rid="B3">Boeta <italic>et al</italic>., 2006</xref>). The ability to induce ovulation at a predictable time has increased the efficiency of equine breeding programs, where benefits include a decrease in the number of servings per cycle for studs; which allows for greater mare registries annually (<xref ref-type="bibr" rid="B9">Finan <italic>et al</italic>., 2016</xref>). </p>
				<p>Equine reproductive management protocols stimulate ovulation induction to provide programmed ovulation in mares for optimal management of reproduction. In this regard, numerous studies have been reported on the efficacy of prostaglandins, GnRH, GnRH analogs and hCG in inducing ovulation in the mare <xref ref-type="bibr" rid="B18">(Yoon, 2012)</xref>. Diameter, fluctuating shape of the dominant follicle, and endometrial folding have been reported to be considered in estimating ovulation prediction; however, they are not precise or standard enough (<xref ref-type="bibr" rid="B15">Ramírez <italic>et al.</italic>, 2010</xref>). Therefore, hormonal induction or synchronization of ovulation is important, which favors the determination of the optimal moment for insemination. The administration of human chorionic gonadotropin (hCG) represents the most frequent treatment method for this purpose (<xref ref-type="bibr" rid="B6">Dolezel <italic>et al</italic>., 2012</xref>). Conversely, anovulation is a normal physiological activity in the mare during the transition from spring to autumn; however, anovulatory follicular development occasionally occurs in the reproductive season. This can be explained because the follicles grow between 5 and 15 cm in diameter and persist for up to two months. These follicles produce abnormal estrous behavior and prolong the inter-ovulatory period (<xref ref-type="bibr" rid="B1">Ángel and Bran, 2010</xref>). </p>
			</sec>
			<sec sec-type="conclusions">
				<title>CONCLUSION</title>
				<p>Hormonal treatments with deslorelin acetate and human chorionic gonadotropin respond to ovarian activity in postpartum Quarter mile mares with ovarian follicles ≥ 35 mm in diameter; therefore, the two hormonal treatments are viable options to control ovarian follicular development, and induce ovulation in postpartum quarter mile mares in reproductive management protocols.</p>
			</sec>
		</body>
	</sub-article>
</article>