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				<journal-title>Abanico veterinario</journal-title>
				<abbrev-journal-title abbrev-type="publisher">Abanico vet</abbrev-journal-title>
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			<issn pub-type="ppub">2007-428X</issn>
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					<subject>Artículos originales</subject>
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				<article-title>Comparación de tres sitios de muestreo sanguíneo para la evaluación fisiometabólica en el lechón</article-title>
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				<label>1</label>
				<institution content-type="original">Universidad Autónoma Metropolitana, Doctorado en Ciencias Biológicas y de la Salud, Ciudad de México, México. jsanchezsalcedo@xanum.uam.mx</institution>
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				<label>3</label>
				<institution content-type="original">Universidad Autónoma Metropolitana, Departamento de Biología de la Reproducción, Ciudad de México, México. bjh@xanum.uam.mx</institution>
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				<label>4</label>
				<institution content-type="original">Universidad Autónoma de San Luis Potosí, Facultad de Agronomía y Veterinaria, San Luis Potosí, México. hector.orozco@uaslp.mx Autor responsable: Sánchez-Salcedo José. milagros.gonzalez@uaslp.mx </institution>
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			<author-notes>
				<corresp id="c1">Autor de correspondencia: Orozco-Gregorio Héctor. Centro de Enseñanza, Investigación y Extensión en Producción Porcina, Universidad Nacional Autónoma de México. Km. 2 Carretera Jilotepec-Corrales S/N, Col. La Dalia, 54240. Jilotepec, Estado de México, México.</corresp>
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			<pub-date date-type="pub" publication-format="electronic">
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			<volume>10</volume>
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					<license-p>Este es un artículo publicado en acceso abierto bajo una licencia Creative Commons</license-p>
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			<abstract>
				<title>RESUMEN</title>
				<p>La extracción sanguínea en los lechones neonatos es necesaria para la evaluación fisiometabólica y para determinar alteraciones gaseosas útiles en el diagnóstico de varios fenómenos como la asfixia intraparto; siendo la causa principal no infecciosa que origina una alta tasa de mortalidad neonatal en cerdos. Nuestro objetivo fue evaluar tres de los sitios más comunes de muestreo sanguíneo usados en lechones: cordón umbilical (UC), seno retro orbital (ROS) y vena cava (VC); así como determinar las diferencias entre ellos con respecto a las variables fisiometabólicas y el equilibrio ácido-base. Treinta y dos lechones sanos provenientes de nueve partos eutócicos fueron aleatoriamente seleccionados para los tres sitios de muestreo. Todas las concentraciones fisiometabólicas mostraron valores basales de los parámetros fisiológicos fetales correspondientes al sitio de muestreo. Sin embargo, los valores de UC resultaron más confiables para el diagnóstico del intercambio gaseoso durante la asfixia, debido a su similitud con los parámetros fisiológicos de un neonato sano (pCO<sub>2</sub>= 36.10 ± 2.03, pO<sub>2</sub>= 32.68 ± 3.03); mientras que para el perfil metabólico (glucosa y lactato) los valores de ROS fueron más precisos en determinar la glicemia y el lactato, comparados con los demás sitios. Por consiguiente, cuando el perfil fisiometabólico neonatal es requerido, el abordaje metodológico en el sitio de muestreo tiene que ser específico, de acuerdo a los objetivos planteados y a su subsecuente interpretación.</p>
			</abstract>
			<kwd-group xml:lang="es">
				<title>Palabras clave:</title>
				<kwd>lechones</kwd>
				<kwd>gases sanguíneos</kwd>
				<kwd>cordón umbilical</kwd>
				<kwd>seno retroorbital y vena cava</kwd>
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		<sec sec-type="intro">
			<title>INTRODUCCIÓN</title>
			<p>En producción porcina, existe una tasa elevada de mortalidad neonatal, la cual repercute directamente en el ámbito económico y sobre el bienestar de los animales. Al respecto, es ampliamente aceptado que de manera práctica no ha habido una disminución significativa en el número de mortinatos durante los últimos treinta años, donde se estima que la mortalidad promedio fluctúa entre 16% y 20% (<xref ref-type="bibr" rid="B2">Baxter y Edwards, 2018</xref>); de los cuales el 8% de las muertes corresponden a procesos de asfixia fetal y neonatal (<xref ref-type="bibr" rid="B15">Vanderhaeghe <italic>et al</italic>., 2013</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B16">van Dijk <italic>et al</italic>., 2005</xref>). Por consiguiente, la asfixia intraparto es considerada como la causa principal de origen no infeccioso que subyace la muerte de un número considerable de lechones dentro de las primeras 72 horas postparto (<xref ref-type="bibr" rid="B3">Baxter <italic>et al</italic>., 2011</xref>).</p>
			<p>Algunas características propias de los lechones, como la integridad del cordón umbilical, el orden de expulsión durante el parto y el peso al nacimiento, pueden predisponer a la aparición de asfixia intraparto (<xref ref-type="bibr" rid="B12">Sánchez-Salcedo <italic>et al</italic>., 2019b</xref>). Dichas alteraciones pueden originar cambios en la ventilación pulmonar neonatal, lo que a su vez provoca una disminución en el flujo de oxígeno al cerebro (<xref ref-type="bibr" rid="B6">Herrera-Marschitz <italic>et al</italic>.<italic>,</italic> 2014</xref>), conduciendo a un posible daño neurológico y una adquisición deficiente de inmunidad pasiva, con la incapacidad posterior para aumentar de peso durante el periodo postnatal (<xref ref-type="bibr" rid="B8">Orozco-Gregorio <italic>et al</italic>.<italic>,</italic> 2012</xref>). Aunado a lo anterior, los costos asociados con la mortalidad predestete, desde la gestación hasta el parto, resultan cercanos a los 45.72 dólares (<xref ref-type="bibr" rid="B13">Seddon <italic>et al</italic>., 2013</xref>); por lo que existe una necesidad imperiosa de desarrollar estrategias terapéuticas encaminadas a la prevención o al tratamiento de esta condición.</p>
			<p>Es por esto, que para el diagnóstico correcto de las alteraciones respiratorias de los lechones y para una adecuada intervención terapéutica, es necesaria la evaluación del perfil fisiometabólico y de las concentraciones de gases sanguíneos, como un indicador confiable del pronóstico de viabilidad postparto de los neonatos. No obstante, la extracción sanguínea de un lechón recién nacido es difícil, debido a las condiciones inherentes del nacimiento (presencia de fluidos en el cuerpo, tamaño pequeño y movimientos rápidos); por lo que el sitio y el tiempo de muestreo deben ser precisos. Al respecto, el análisis de gases en sangre se puede realizar a través de sangre arterial o venosa, siendo la opción venosa el procedimiento más seguro y fácil en animales, como los cerdos. Sin embargo, al ser una especie politoca, se puede esperar una amplia gama de variables fisiometabólicas al momento de su nacimiento en diferentes miembros de la misma camada (<xref ref-type="bibr" rid="B8">Orozco-Gregorio <italic>et al</italic>.<italic>,</italic> 2012</xref>), lo cual hace necesario un diagnóstico individualizado.</p>
			<p>Por lo tanto, el objetivo de la presente investigación fue evaluar tres sitios diferentes de muestreo sanguíneo, para la determinación de los perfiles fisiometabólicos en lechones recién nacidos sin evidencia de asfixia y sus diferencias entre los diversos sitios de muestreo: cordón umbilical (UC), seno retro orbital (ROS) y vena cava (VC); con la finalidad de determinar su idoneidad al momento de la toma de decisiones para el diagnóstico de la asfixia intraparto.</p>
		</sec>
		<sec sec-type="materials|methods">
			<title>MATERIAL Y MÉTODOS</title>
			<p>Condiciones del estudio. Para la realización del presente trabajo se emplearon lechones sanos sin evidencia de asfixia (<italic>n</italic> = 32), nacidos de 9 cerdas multiparas con partos eutócicos (3.6 ± 0.32 partos; peso: 200-280 kg) de la raza híbrida Yorkshire- Landrace; con la finalidad de determinar las diferencias basales entre los tres sitios de muestreo. Todas las cerdas se encontraron alojadas en el Centro de Enseñanza, Investigación y Extensión en Producción Porcina de la Universidad Nacional Autónoma de México (CEIEPP-UNAM), bajo condiciones normales de maternidad (dieta estándar y agua <italic>ad libitum</italic> en jaulas individuales de maternidad con temperatura controlada de 23 ± 2 ºC).</p>
			<p>Todos los procedimientos realizados con animales fueron aprobados por el Comité Interno para el Cuidado y Uso de los Animales de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia (CICUA-FMVZ-UNAM), con el número de aprobación de protocolo 062. Además, durante la realización de todas las pruebas se siguieron las directrices nacionales para el uso ético de animales para experimentación.</p>
			<p>Procedimientos experimentales. Las cerdas fueron aleatoriamente seleccionadas para el muestreo de sus lechones (UC: <italic>n</italic> = 12 lechones, ROS: <italic>n</italic> = 10 lechones y VC: <italic>n</italic> = 10 lechones). Todos los partos fueron inducidos 24 horas previas a la fecha probable de parto (día 115 de gestación) con 1 mL intramuscular de cloprostenol (Bioestrophan, Laboratorios Syva, Querétaro, México), según las prácticas rutinarias de la unidad de producción. Al nacimiento ningún lechon recibió atención médica ni intervenciones terapéuticas, con la finalidad de no interferir en el proceso natural del parto.</p>
			<p>Inmediatamente después del nacimiento y en un tiempo no mayor a 10 segundos, las muestras sanguíneas de UC y VC fueron tomadas mediante una punción con jeringas heparinizadas (INHEPAR 5000 UI/mL, PiSA Farmaceutica, México; agujas 23 g x 1’’); mientras que las muestras correspondientes a ROS fueron tomadas mediante tubos capilares de borosilicato también heparinizados (<xref ref-type="bibr" rid="B9">Orozco-Gregorio <italic>et al</italic>., 2008</xref>; (<xref ref-type="bibr" rid="B12">Sánchez-Salcedo <italic>et al</italic>., 2019b</xref>). Inmediatamente después de la extracción sanguínea, las concentraciones de glucosa (mg/dL), lactato (mg/dL), pH y las presiones parciales de dióxido de carbono [pCO<sub>2</sub> (mm Hg)] y oxígeno [pO<sub>2</sub> (mm Hg)] fueron cuantificadas, usando un gasómetro clínico automatizado (Epocal Inc., Ottawa, Canada).</p>
			<p>Analisis estadístico. Para el análisis de los resultados, los valores fueron expresados como la media ± EE para las concentraciones sanguíneas de pCO<sub>2</sub>, pO<sub>2</sub>, glucosa, lactato y pH en cada uno de los tres sitios de muestreo. Los datos se analizaron utilizando un análisis de varianza de una vía (ANOVA), seguida de la prueba de Holm- Sidak como <italic>post-hoc</italic>. Para todas las variables los valores de <italic>P</italic> &lt; 0.05 fueron considerados como significativos.</p>
		</sec>
		<sec sec-type="results|discussion">
			<title>RESULTADOS Y DISCUSIÓN</title>
			<p>Todas las cerdas empleadas para la evaluación fisiometabólica de sus lechones tuvieron partos eutócicos, con duraciones aproximadas de 305.06 ± 50.5 minutos y un promedio de 11.80 ± 0.68 lechones vivos por camada (camadas de 12.30 ± 0.59 lechones en total).</p>
			<p>Durante el proceso de parto todos los fetos experimentan periodos de hipoxia de severidad variable; los cuales, de no ser interrumpidos por el inicio de la respiración espontánea al momento del nacimiento pueden conllevar a procesos de apnea neonatal y derivar en asfixia (<xref ref-type="bibr" rid="B11">Sánchez-Salcedo <italic>et al</italic>., 2019a</xref>).</p>
			<p>Es importante remarcar que previo al parto, el pH fetal esperado es aproximadamente de 7.35, para posteriormente disminuir de manera fisiológica a valores cercanos a 7.25; siendo ambos valores considerados como normales. No obstante, los valores de pH entre 7.25 y 7.20 son tomados en cuenta como subnormales, por lo que requieren monitoreo; mientras que aquellos menores a 7.20 indicarán la presencia inminente de hipoxia fetal (<xref ref-type="bibr" rid="B12">Sánchez-Salcedo <italic>et al</italic>., 2019b</xref>).</p>
			<p>Como se pudo evidenciar en nuestros resultados, solo aquellos valores de pH obtenidos a partir de UC y VC fueron concordantes con perfiles de lechones no asfixiados (<xref ref-type="table" rid="t1">tabla 1</xref>); mientras que las muestras tomadas de ROS arrojaron valores promedio sugerentes de asfixia (pH: 7.19 ± 0.06), sin que los lechones mostraran signología propia del proceso; por lo que dicho sitio de muestreo no resulta confiable para un abordaje diagnóstico de esta alteración, ya que podemos inferir que podría ser incluso menor, bajo condiciones de asfixia en los recién nacidos. Adicionalmente, para diagnosticar un proceso como la asfixia en el cual se encuentra involucrado el intercambio gaseoso, los valores de pH tendrán que guardar relación directa con el oxígeno y el dióxido de carbono.</p>
			<p>
				<table-wrap id="t1">
					<label>Cuadro 1</label>
					<caption>
						<title>Variables sanguíneas al parto tomadas de tres sitios diferentes de muestreo en lechones neonatos sin evidencia de asfixia</title>
					</caption>
					<table style="border-collapse:separate;">
						<tbody>
							<tr>
								<td style="border-top: 1px solid black; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">Variable</td>
								<td style="border-top: 1px solid black; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">UC</td>
								<td style="border-top: 1px solid black; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">ROS</td>
								<td style="border-top: 1px solid black; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">VC</td>
							</tr>
							<tr>
								<td style="border:0; text-align: center;">pH</td>
								<td style="border:0; text-align: center;">7.34 ± 0.04 a</td>
								<td style="border:0; text-align: center;">7.19 ± 0.06 a</td>
								<td style="border:0; text-align: center;">7.27 ± 0.01 a</td>
							</tr>
							<tr>
								<td style="border:0; text-align: center;">Glucosa (mg/dL)</td>
								<td style="border:0; text-align: center;">38.91 ± 2.63 a</td>
								<td style="border:0; text-align: center;">43.60 ± 5.37 a</td>
								<td style="border:0; text-align: center;">38.20 ± 3.89 a</td>
							</tr>
							<tr>
								<td style="border-top: none; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">Lactato (mg/dL)</td>
								<td style="border-top: none; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">41.36 ± 5.08 a</td>
								<td style="border-top: none; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">60.66 ± 8.51 b</td>
								<td style="border-top: none; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">35.21 ± 7.51 a</td>
							</tr>
						</tbody>
					</table>
					<table-wrap-foot>
						<fn id="TFN1">
							<p>Medias ± EE. UC= cordón umbilical ROS= seno retro orbital VC= vena cava. a, b Diferentes letras en la misma fila indican diferencias significativas entre el sitio de muestreo (<italic>P</italic> &lt;0.001)</p>
						</fn>
					</table-wrap-foot>
				</table-wrap>
			</p>
			<p>El intercambio gaseoso es un aspecto fundamental para la evaluación fisiometabólica de los lechones neonatos, debido a que dichas variables nos permiten evaluar el grado de asfixia durante el parto, al mismo tiempo que predecir la supervivencia en el periodo postparto (<xref ref-type="bibr" rid="B9">Orozco-Gregorio <italic>et al</italic>., 2008</xref>). Con respecto a las variables del intercambio gaseoso en el presente trabajo (<xref ref-type="fig" rid="f1">figura 1</xref>), los valores de pCO<sub>2</sub> fueron significativamente mayores en las muestras obtenidas a partir de ROS y VC (49.76 ± 4.35 y 46.06 ± 2.03, respectivamente), en comparación con aquellas provenientes de UC (36.10 ± 2.03, <italic>P</italic> &lt; 0.05). Lo anterior, posiblemente se deba a que el estado ácido- base neonatal se encuentra mejor reflejado en la circulación arterial umbilical; mientras que el contenido gaseoso a partir de la sangre venosa umbilical (como se tomó en este protocolo), depende principalmente del estado ácido-base materno y de las funciones placentarias; más no directamente del neonato (<xref ref-type="bibr" rid="B17">Yli y Kjellmer, 2016</xref>). Por consiguiente, los valores obtenidos para pCO<sub>2</sub> a partir de las muestras de UC no resultan de utilidad diagnóstica para los criterios aceptados para un neonato asfíctico (hipercapnia y acidosis), ya que no concuerdan con el pH del mismo sitio de muestreo, el cual corresponde a un perfil sano (7.34 ± 0.04), e incluso con valores por encima de la media. De manera contraria, los valores reportados a partir de ROS y VC para pCO<sub>2</sub>, sí pueden ser asociados con aquellos descritos por <xref ref-type="bibr" rid="B8">Orozco-Gregorio <italic>et al</italic>.<italic>,</italic> (2012)</xref> para lechones sanos no asfixiados durante el parto y 24 horas después (60.4 ± 18.7 and 42.1 ± 2.2 mm Hg, respectivamente).</p>
			<p>
				<fig id="f1">
					<label>Figura 1</label>
					<caption>
						<title>Valores basales del intercambio gaseoso (mm Hg) al nacimiento de tres sitios diferentes en lechones neonatos sin asfixia. Diferentes letras <sup>a, b, c</sup> dentro del mismo grupo indican diferencias significativas (<italic>P &lt;</italic> 0.05). Se muestran valores como medias ± EE y prueba de Holm-Sidak como <italic>post-hoc</italic>, (<italic>P &lt;</italic> 0.05)</title>
					</caption>
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				</fig>
			</p>
			<p>En contraste, los valores de la pO<sub>2</sub> de UC, fueron aproximadamente tres veces mayores que aquellos obtenidos a partir de VC (32.68 ± 3.03 mm Hg VS 12.01 ± 0.89 mm Hg, <italic>P</italic> &lt; 0.001, respectivamente). En nuestro estudio los valores de lechones sanos a partir de VC fueron más bajos que aquellos reportados para neonatos con asfixia (21.7 ± 10.5 mm Hg) por <xref ref-type="bibr" rid="B8">Orozco-Gregorio <italic>et al.</italic>, (2012)</xref>, sin un perfil asfíctico en su totalidad (valores de pH y pCO<sub>2</sub> dentro de rangos normales); lo que confirma que dichos animales no fueron neonatos asfixiados; sin embargo, su pO<sub>2</sub> fue la más baja. De manera contraria, el muestreo de ROS mostró valores 50% más altos que VC para la misma variable (pO<sub>2</sub>: 24.12 ± 3.09 mm Hg VS 12.01 ± 0.89 mm Hg, <italic>P</italic> &lt; 0.05), pero más bajos que UC (32.68 ± 3.03 mm Hg, P &lt; 0.05); mientras que el oxígeno en ROS de la misma manera que en VC, exhibió concentraciones sugerentes de asfixia intraparto (&lt; 26.4 ± 17.7 mm Hg), lo que puede generar confusión, y por lo tanto conducir a un diagnóstico erróneo, ya que nuestros datos en conjunto no coinciden con los criterios de inclusión diagnóstica de un lechón con asfixia. Sin embargo, es ampliamente aceptado que el parto aumenta el riesgo de presentar una oxigenación comprometida por parte del feto, lo que puede conducir a interrupciones en el intercambio gaseoso, donde ciertos grados de hipoxemia y acidemia son normales; incluso en fetos sanos durante un parto eutócico (<xref ref-type="bibr" rid="B17">Yli y Kjellmer, 2016</xref>).</p>
			<p>En nuestros hallazgos para la pO<sub>2</sub>, las diferencias entre los tres sitios de muestreo corresponden más a una condición fisiológica que a una patológica. En la sangre de UC, la concentración más alta de oxígeno proporcionada al feto está a una presión de sólo 30-35 mm Hg. Posteriormente, el 50% de la sangre venosa proveniente de UC pasa a través de la circulación hepática y se mezcla con sangre poco oxigenada, para pasar desde la vena cava anterior a la circulación pulmonar; por lo que la muestra obtenida de VC (12-24 mm Hg) será normalmente menos oxigenada (<xref ref-type="bibr" rid="B5">Hall, 2016</xref>). De manera inversa, la parte superior del cuerpo en los fetos (ROS), es exclusivamente irrigada con sangre proveniente del ventrículo izquierdo que tiene una pO<sub>2</sub> ligeramente más alta que la sangre perfundida hacia la parte inferior del feto (<xref ref-type="bibr" rid="B5">Hall, 2016</xref>).</p>
			<p>Cuando en cualquier tejido hay concentraciones de oxígeno subóptimas, hay una pérdida de la capacidad de fosforilación oxidativa y una transición resultante de un estado metabólico aeróbico a uno anaeróbico. En condiciones anaeróbicas, el piruvato es reducido a lactato, lo que lleva a una transferencia de energía ineficiente en el neonato (<xref ref-type="bibr" rid="B17">Yli y Kjellmer, 2016</xref>).</p>
			<p>Nuestras concentraciones de lactato obtenidas en ROS fueron significativamente mayores (60.66 ± 8.51 mg/dL), que aquellas de UC y VC (41.36 ± 5.08 mg/dL and 35.21 ± 7.51 mg/dL, <italic>P</italic> &lt; 0.01, respectivamente). No obstante, nuestros valores de ROS son consistentes con aquellos reportados por <xref ref-type="bibr" rid="B9">Orozco-Gregorio <italic>et al</italic>.<italic>,</italic> (2008)</xref> para neonatos sanos (65.3 ± 15.5 mg/dL), que también fueron colectados de ROS. Al respecto, es sabido que el lactato también puede funcionar como un sustrato energético cerebral en un feto sano bajo condiciones hipóxicas transitorias e inherentes a un trabajo de parto típico, consumiendo incluso más sustrato que un metabolismo oxidativo (<xref ref-type="bibr" rid="B4">Boardman y Hawdon, 2015</xref>).</p>
			<p>La glucosa es considerada como la mayor fuente de energía para los lechones neonatos, debido a que dichos animales nacen con un almacenamiento energético limitado; de tal forma que, si la suplementación de glucosa y los requerimientos de ésta se encuentran equilibrados, los fetos obtendrán una oxigenación adecuada para metabolizar la glucosa aeróbicamente y transferir la energía requerida para las funciones de los órganos (<xref ref-type="bibr" rid="B17">Yli y Kjellmer, 2016</xref>). Sin embargo, las concentraciones de glucosa en sangre reportadas por diferentes estudios no son comparables con nuestros hallazgos, ya que son considerablemente mayores [UC: 52.25 ± 0.12 mg/dL (<xref ref-type="bibr" rid="B10">Rootwelt <italic>et al</italic>.<italic>,</italic> 2014</xref>); ROS: 89.3 ± 11.4 mg/dL (<xref ref-type="bibr" rid="B9">Orozco-Gregorio <italic>et al</italic>.<italic>,</italic> 2008</xref>); VC:62.3 ± 8.9 mg/dL (<xref ref-type="bibr" rid="B14">Trujillo-Ortega <italic>et al</italic>.<italic>,</italic> 2007</xref>)], en comparación con nuestros resultados (<xref ref-type="table" rid="t1">tabla 1</xref>). Al respecto, es necesario tener en cuenta que nuestras muestras sanguíneas se obtuvieron inmediatamente después del nacimiento, con los lechones todavía en apnea (&lt; 10 segundos postparto).</p>
			<p>Es ampliamente aceptado que una caída significativa en la glucosa durante el parto demuestra la rapidez con que se agotan las reservas de este sustrato energético. En este punto, el feto (y luego el neonato) necesita mantener la normoglucemia a través de la glucólisis anaeróbica, debido a su estado hipóxico (<xref ref-type="bibr" rid="B7">Martz <italic>et al</italic>.<italic>,</italic> 2017</xref>); por lo que el cerebro neonatal inmaduro en comparación con un cerebro adulto maduro, es relativamente más resistente a la lesiones causadas por la hipoglucemia (glucosa &lt;40 mg/dL), haciendo frente a dicha alteración mediante la disminución de los requerimientos energéticos cerebrales, aumentando el flujo sanguíneo a nivel encefálico y la movilización de glucosa; mejorando por consiguiente la capacidad de utilizar al lactato como fuente de energía alternativa (<xref ref-type="bibr" rid="B1">Basu <italic>et al</italic>.<italic>,</italic> 2009</xref>).</p>
			<p>Los resultados del presente informe indican que entre los tres sitios de muestreo sanguíneo para la evaluación fisiometabólica de los lechones neonatos, la diferencia principal radica en la dinámica de los gases en sangre, debido a un proceso fisiológico normal. Otro aspecto considerable es el enfoque metodológico empleado, donde la toma de muestras sanguíneas a partir de CU resulta ser el único procedimiento no invasivo en cerdos recién nacidos, con la limitación de poder obtener sangre mezclada (arterial y venosa), en comparación con ROS y VC, donde ambos pueden confirmar una muestra venosa, pero no el bienestar de los animales, si el muestreo es realizado por personal no capacitado. De la misma forma, tanto ROS como VC pueden proporcionar valores significativamente elevados y disminuidos respectivamente en caso de requerir un diagnóstico metabólico del neonato, basado en glucosa y lactato, por lo que su uso deberá de determinarse según las necesidades de la investigación, ya que no serían del todo funcionales para evaluar las capacidades respiratorias de los recién nacidos. No obstante, e independientemente del sitio de muestreo, el diagnóstico correcto de la asfixia intraparto requiere necesariamente el cumplimiento de los criterios de hipercapnia, acidosis e hipoxia, para ser considerado como una herramienta útil en producción.</p>
		</sec>
		<sec sec-type="conclusions">
			<title>CONCLUSIÓN</title>
			<p>Con la finalidad de determinar el sitio idóneo de muestreo sanguíneo para el diagnóstico de la asfixia intraparto, se puede concluir que los valores del cordón umbilical resultaron más confiables para el diagnóstico del intercambio gaseoso durante la asfixia, debido a su similitud con los parámetros fisiológicos de un neonato sano (pCO<sub>2</sub>= 36.10 ± 2.03, pO<sub>2</sub>= 32.68 ± 3.03); mientras que para el perfil metabólico los valores de seno retro orbital fueron más precisos en determinar la glicemia y el lactato.</p>
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			<title>LITERATURA CITADA</title>
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					<article-title>Caffeine administered to pregnant sows improves piglet vitality, gas exchange and body weight gain</article-title>
					<source>Animal Reproduction Science</source>
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					<article-title>A study of piglets born by spontaneous parturition under uncontrolled conditions: could this be a naturalistic model for the study of intrapartum asphyxia?</article-title>
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					<article-title>Factors affecting duration of the expulsive stage of parturition and piglet birth intervals in sows with uncomplicated, spontaneous farrowings</article-title>
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					<article-title>Pathophysiology of foetal oxygenation and cell damage during labour</article-title>
					<source>Best Practice &amp; Research: Clinical Obstetrics &amp; Gynaecology</source>
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				<p>Clave: 2020-21.</p>
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					<subject>Original articles</subject>
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			<title-group>
				<article-title>Comparison of three blood-sampling sites, for physiometabolic evaluation piglet</article-title>
			</title-group>
			<abstract>
				<title>ABSTRACT</title>
				<p>Blood drawing of newborn piglets is necessary for physio-metabolic profiles assessment, and to determine gas change levels in it, what it is used in various phenomena diagnosis, such as, intrapartum asphyxia a non-infectious condition that causes a high rate of neonatal mortality in pigs. This study aimed to test three of the most common blood sampling sites used in piglets: umbilical cord (UC), retro- orbital sinus (ROS), and cava vein (VC), besides determining the differences among them, concerning to physio-metabolic variables and the acid-base balance. Thirty-two healthy non-asphyxiated piglets were randomly selected, coming from nine eutocic farrowing to carry out the three sampling sites. All of the physio-metabolic concentrations determined showed basal values within normal fetal ranges corresponding to the sampling site. However, UC values were more suitable for gas exchange diagnosis in asphyxia due to their similarity with physiological parameters of a normal newborn (pCO<sub>2</sub>= 36.10 ± 2.03, pO<sub>2</sub>= 32.68 ± 3.03), whereas for the metabolic profile (glucose and lactate) ROS values were more accurate for measuring a common lactate and glycaemia profile than the other sites. Therefore, when a physio-metabolic profile is required, the methodological approach of the blood-sampling site should be adequate to obtain the data needed for research following planned objectives and subsequent interpretation.</p>
			</abstract>
			<kwd-group xml:lang="en">
				<title>Keywords:</title>
				<kwd>newborn pig</kwd>
				<kwd>blood gasses</kwd>
				<kwd>umbilical cord</kwd>
				<kwd>retro orbital sinus</kwd>
				<kwd>vena cava</kwd>
			</kwd-group>
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		<body>
			<sec sec-type="intro">
				<title>INTRODUCTION</title>
				<p>In pig production, there is a high neonatal mortality rate, which has a direct impact on the economic sphere and on the welfare of the animals . In this regard, it is widely accepted that in a practical way there has not been a significant decrease in the number of stillbirths during the last thirty years, where it is estimated that the average mortality fluctuates between 16% and 20% (<xref ref-type="bibr" rid="B2">Baxter and Edwards, 2018</xref>). Of which 8% of deaths correspond to processes of fetal and neonatal asphyxia (<xref ref-type="bibr" rid="B15">Vanderhaeghe al., 2013</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B17">van Dijk <italic>et al.,</italic> 2005</xref>). Consequently, intrapartum asphyxia is considered as the main cause of non-infectious origin underlying the death of a considerable number of piglets within the first 72 hours postpartum (<xref ref-type="bibr" rid="B3">Baxter <italic>et al.,</italic> 2011</xref>).</p>
				<p>Some characteristics of piglets, such as the integrity of the umbilical cord, the order of expulsion during parturition and birth weight, can predispose to the appearance of intrapartum asphyxia (<xref ref-type="bibr" rid="B12">Sánchez-Salcedo <italic>et al.,</italic> 2019b</xref>). These alterations can cause changes in neonatal pulmonary ventilation, which in turn causes a decrease in oxygen flow to the brain (<xref ref-type="bibr" rid="B6">Herrera-Marschitz <italic>et al.,</italic> 2014</xref>), leading to possible neurological damage and a deficient acquisition of passive immunity , with the subsequent inability to gain weight during the postnatal period (<xref ref-type="bibr" rid="B8">Orozco-Gregorio <italic>et al.,</italic> 2012</xref>). In addition to the above, the costs associated with pre-weaning mortality, from gestation to delivery, are close to 45.72 dollars (<xref ref-type="bibr" rid="B13">Seddon et al., 2013</xref>). Therefore, there is an urgent need to develop therapeutic strategies aimed at the prevention or treatment of this condition.</p>
				<p>For this reason, for the correct diagnosis of respiratory disorders in piglets and for adequate therapeutic intervention, it is necessary to assess the physiometabolic profile and blood gas concentrations, as a reliable indicator of the prognosis of postpartum viability of neonates. However, the extraction of blood from a newborn piglet is difficult, due to the inherent conditions of birth (presence of fluids in the body, small size and rapid movements); so the site and the sampling time must be precise. In this regard, blood gas analysis can be performed through arterial or venous blood, the venous option being the safest and easiest procedure in animals , such as pigs. However, being a species political, a wide range of physiometabolic variables can be expected at the time of its birth in different members of the same litter (<xref ref-type="bibr" rid="B8">Orozco-Gregorio <italic>et al.,</italic> 2012</xref>), which makes an individualized diagnosis necessary.</p>
				<p>Therefore, the objective of the present investigation was to evaluate three different blood-sampling sites. For the determination of the physiometabolic profiles in newborn piglets without evidence of asphyxia and their differences between the various sampling sites: umbilical cord (UC), retro orbital sinus (ROS) and vena cava (VC) in order to determine its suitability at the time of decision making for the diagnosis of intrapartum asphyxia.</p>
			</sec>
			<sec sec-type="materials|methods">
				<title>MATERIAL AND METHODS</title>
				<p>Study conditions. Healthy piglets without evidence of suffocation (n = 32), born from 9 multiparous sows with eutocic farrowing (3.6 ± 0.32 farrowing; weight: 200-280 kg) of the Yorkshire-Landrace hybrid breed were used to carry out this work; in order to determine the baseline differences between the three sampling sites. All the sows were housed at the Center for Teaching, Research and Extension in Swine Production of the National Autonomous University of México (CEIEPP-UNAM), under normal maternity conditions (standard diet and ad libitum water in individual maternity cages with temperature controlled temperature of 23 ± 2 °C).</p>
				<p>The Internal Committee approved all procedures carried out with animals for the Care and Use of Animals of the Faculty of Veterinary Medicine and Zootechnics (CICUA- FMVZ-UNAM), with the protocol approval number 062. In addition, during the performance National guidelines for the ethical use of experimental animals were for all tests followed.</p>
				<p>Experimental procedures. The sows were randomly selected for the sampling of their piglets (UC: n = 12 piglets, ROS: n = 10 piglets and VC: n = 10 piglets). All deliveries were induced 24 hours prior to the probable delivery date (day 115 of gestation) with 1 mL intramuscular cloprostenol (Bioestrophan, Laboratorios Syva, Querétaro, México), according to the routine practices of the production unit. At birth, no piglets received medical attention or therapeutic interventions, in order not to interfere with the natural process of parturition.</p>
				<p>Immediately after birth and in a time no longerthan 10 seconds, the UC and VC blood samples were taken by puncture with heparinized syringes (INHEPAR 5000 lU/mL, PiSA Farmacéutica, México; needles 23 g x 1 &quot;); while the samples corresponding to ROS were taken through borosilicate capillary tubes also heparinized (Orozco- Gregorio <italic>et al.,</italic> 2008; (Sánchez-Salcedo <italic>et al.,</italic> 2019<sup>b</sup>). Immediately after blood extraction, glucose concentrations (mg/dL), lactate (mg / dL), pH and partial pressures of carbon dioxide [pCO<sub>2</sub> (mm Hg)] and oxygen [pO<sub>2</sub> (mm Hg)] were quantified, using an automated clinical gasometer (Epocal Inc., Ottawa, Cañada).</p>
				<p>Statistical analysis. For the analysis of the results, the values were expressed as the mean ± SE for the blood concentrations of pCO<sub>2</sub>, pO<sub>2</sub>, glucose, lactate and pH in each of the three sampling sites. Data were analyzed using a one-way analysis of variance (ANOVA), followed by the Holm-Sidak test as post-hoc. For all variables the values of P &lt;0.05 were considered significant.</p>
			</sec>
			<sec sec-type="results|discussion">
				<title>RESULTS AND DISCUSSION</title>
				<p>All sows used for the physiometabolic evaluation of their piglets had eutocic fiarrowings, with approximate durations of 305.06 ± 50.5 minutes and an average of 11.80 ± 0.68 live piglets per litter (litters of 12.30 ± 0.59 piglets in total).</p>
				<p>During the labor process, all fetuses experience periods of hypoxia of varying severity; which, if not interrupted by the onset of spontaneous respiration at the time of birth, can lead to neonatal apnea processes and lead to asphyxia (<xref ref-type="bibr" rid="B11">Sánchez-Salcedo et al.<italic>,</italic> 2019a</xref>).</p>
				<p>It is important to note that prior to delivery, the expected fetal pH is approximately 7.35, to later decrease in a physiological way to values close to 7.25; both values being considered normal. However, the pH values between 7.25 and 7.20 are taken into account as subnormal, so they require ; while those under 7.20 indicate the imminent presence of fetal hypoxia (<xref ref-type="bibr" rid="B11">Sánchez-Salcedo <italic>et al.,</italic> 2019a</xref>).</p>
				<p>As could be evidenced in our results, only those pH values obtained from UC and VC were consistent with the profiles of non-asphyxiated piglets (<xref ref-type="table" rid="t2">table 1</xref>); while the samples taken from ROS showed average values suggestive of asphyxia (pH: 7.19 ± 0.06), without the piglets showing signs of the process. Therefore, this sampling site is not reliable for a diagnostic approach to this alteration, since we can infer that it could be even less, under conditions of asphyxia in newborns. Additionally, to diagnose a process such as asphyxia in which gas exchange is involved, the pH values will have to be directly related to oxygen and carbon dioxide.</p>
				<p>
					<table-wrap id="t2">
						<label>Table 1</label>
						<caption>
							<title>Blood variables at delivery taken from three different sampling sites in neonatal</title>
						</caption>
						<table style="border-collapse:separate;">
							<tbody>
								<tr>
									<td style="border-top: 1px solid black; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">Variable</td>
									<td style="border-top: 1px solid black; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">UC</td>
									<td style="border-top: 1px solid black; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">ROS</td>
									<td style="border-top: 1px solid black; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">VC</td>
								</tr>
								<tr>
									<td style="border:0; text-align: center;">pH</td>
									<td style="border:0; text-align: center;">7.34 ± 0.04 a</td>
									<td style="border:0; text-align: center;">7.19 ± 0.06 a</td>
									<td style="border:0; text-align: center;">7.27 ± 0.01 a</td>
								</tr>
								<tr>
									<td style="border:0; text-align: center;"> Glucose(mg/dL)</td>
									<td style="border:0; text-align: center;">38.91 ± 2.63 a</td>
									<td style="border:0; text-align: center;">43.60 ± 5.37 a</td>
									<td style="border:0; text-align: center;">38.20 ± 3.89 a</td>
								</tr>
								<tr>
									<td style="border-top: none; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">Lactate (mg/dL)</td>
									<td style="border-top: none; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">41.36 ± 5.08 a</td>
									<td style="border-top: none; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">60.66 ± 8.51 b</td>
									<td style="border-top: none; border-bottom: 1px solid black; border-left: none; border-right: none; text-align: center;">35.21 ± 7.51 a</td>
								</tr>
							</tbody>
						</table>
						<table-wrap-foot>
							<fn id="TFN2">
								<p>Mean ± SE. UC = umbilical cord ROS = retro orbital sinus VC = vena cava. <sup>ab</sup> Different letters in the same row indicate significant differences between the sampling site (P &lt;0.001)</p>
							</fn>
						</table-wrap-foot>
					</table-wrap>
				</p>
				<p>Gas exchange is a fundamental aspect for the physiometabolic evaluation of neonatal piglets, since these variables allow us to assess the degree of asphyxia during parturition, at the same time as to predict survival in the postpartum period (<xref ref-type="bibr" rid="B9">Orozco- Gregorio <italic>et al.,</italic> 2008</xref>). Regarding the gas exchange variables in the present work (<xref ref-type="fig" rid="f2">Figure 1</xref>), the pCO<sub>2</sub> values were significantly higher in the samples obtained from ROS and VC (49.76 ± 4.35 and 46.06 ± 2.03, respectively), compared to those from UC (36.10 ± 2.03, P &lt;0.05). This is possibly due to the fact that the neonatal acid-base State is better reflected in the umbilical arterial circulation; while the gaseous content from umbilical venous blood (as taken in this protocol), depends mainly on the maternal acid-base State and on placental functions; but not directly from the newborn (<xref ref-type="bibr" rid="B17">Yli y Kjellmer, 2016</xref>). Consequently, the values obtained for pCO<sub>2</sub> from the UC samples are not of diagnostic utility for the accepted criteria for an asphyctic neonate (hypercapnia and acidosis), since they do not agree with the pH of the same sampling site, which corresponds to a healthy profile (7.34 ± 0.04), and even with values above the mean. On the contrary, the values reported from ROS and VC for pCO<sub>2</sub> can be associated with those described by <xref ref-type="bibr" rid="B8">Orozco-Gregorio <italic>et al.,</italic> (2012)</xref> for healthy piglets not asphyxiated during parturition and 24 hours later (60.4 ± 18.7 and 42.1 ± 2.2 mm Hg, respectively).</p>
				<p>
					<fig id="f2">
						<label>Figure 1</label>
						<caption>
							<title>Basal values of gas exchange (mm Hg) at birth from three different sites in neonatal piglets without asphyxia. Different letters <sup>a</sup>-<sup>b</sup>-<sup>c</sup> within the same group indicate significant differences (P &lt;0.05). Values are shown as means ± SE and Holm-Sidak test as <italic>post-hoc,</italic> (P &lt;0.05)</title>
						</caption>
						<graphic xlink:href="2448-6132-av-10-e108-gf2.png"/>
					</fig>
				</p>
				<p>In contrast, the pO<sub>2</sub> values of UC were approximately three times higher than those obtained from VC (32.68 ± 3.03 mm Hg 12.01 ± 0.89 mm Hg, <italic>P</italic> &lt;0.001, respectively). In our study, the values of healthy piglets from CV were lower than those reported for neonates with asphyxia (21.7 ± 10.5 mm Hg) by <xref ref-type="bibr" rid="B8">Orozco-Gregorio <italic>et al.,</italic> (2012)</xref>, without an asphyctic profile in its entirety (values pH and pCO<sub>2</sub> within normal ranges); which confirms that these animals were not asphyxiated neonates; however, its pO<sub>2</sub> was the lowest. On the contrary, ROS sampling showed values50% higher than VC for the same variable (pO<sub>2</sub>: 24.12 ± 3.09 mm Hg VS 12.01 ± 0.89 mm Hg, P &lt;0.05), but lower than UC (32.68 ± 3.03 mm Hg, P &lt;0.05). The oxygen in ROS, in the same way as in VC, exhibited concentrations suggestive of intrapartum asphyxia (&lt;26.4 ± 17.7 mm Hg), which can generate confusion, and therefore lead to an erroneous diagnosis, since our data in set did not match the diagnostic inclusion criteria of a piglet with suffocation. However, it is widely accepted that childbirth increases the risk of compromised oxygenation by the fetus, which can lead to interruptions in gas exchange, where certain degrees of hypoxemia and acidemia are normal; even in healthy fetuses during a eutocic delivery (<xref ref-type="bibr" rid="B17">Yli y Kjellmer, 2016</xref>).</p>
				<p>ln our findings for pO<sub>2</sub>, the differences between the three sampling sites correspond more to a physiological condition than a pathological one. In UC blood, the highest concentration of oxygen delivered to the fetus is at a pressure of only 30-35 mm Hg. Subsequently, 50% of the venous blood from UC passes through the hepatic circulation and mixes with poorly oxygenated blood, to pass from the anterior vena cava to the pulmonary circulation; therefore, the sample obtained from VC (12-24 mm Hg) will normally be less oxygenated (<xref ref-type="bibr" rid="B5">Hall, 2016</xref>). Conversely, the upper part of the body in fetuses (ROS) is exclusively with blood from the left ventricle supplied, which has a slightly higher pO<sub>2</sub> than the blood perfused towards the lower part of the fetus (Hall, 2016).</p>
				<p>When suboptimal oxygen concentrations are present in any tissue, there is a loss of oxidative phosphorylation capacity and a resulting transition from an aerobio to an anaerobio metabolic State. Under anaerobio conditions, pyruvate is reduced to lactate, leading to inefficient energy transfer in the neonate (<xref ref-type="bibr" rid="B17">Yli and Kjellmer, 2016</xref>).</p>
				<p>Our lactate concentrations obtained in ROS were significantly higher (60.66 ± 8.51 mg/dL), than those of UC and VC (41.36 ± 5.08 mg/dl and 35.21 ± 7.51 mg/dl, P &lt;0.01, respectively). However, our ROS values are consistent with those reported by <xref ref-type="bibr" rid="B9">Orozco-Gregorio <italic>et al.,</italic>(2008)</xref> for healthy neonates (65.3 ± 15.5 mg/dL), which were also collected from ROS. In this regard, it is known that lactate can also function as a brain energy substrate in a healthy fetus under transient hypoxic conditions inherent to a typical labor, consuming even more substrate than oxidative metabolism (<xref ref-type="bibr" rid="B4">Boardman and Hawdon, 2015</xref>).</p>
				<p>Glucose is considered the main source of energy for newborn piglets, because these animals are born with limited energy storage; in such a way that, if glucose supplementation and glucose requirements are balanced, fetuses will obtain adequate oxygenation to metabolize glucose aerobically and transfer the energy required for organ functions (<xref ref-type="bibr" rid="B17">Yli and Kjellmer, 2016</xref>). However, the blood glucose concentrations reported by different studies are not comparable with our findings, since they are considerably higher [UC: 52.25 ±0.12 mg/dL (<xref ref-type="bibr" rid="B10">Rootwelt <italic>et al.,</italic> 2014</xref>); ROS: 89.3 ± 11.4 mg/dL (<xref ref-type="bibr" rid="B9">Orozco-Gregorio <italic>et al.,</italic> 2008</xref>); CV: 62.3 ± 8.9 mg/dL (Trujillo-Ortega <italic>et al.,</italic> 2007), in comparison with our results (<xref ref-type="table" rid="t2">table 1</xref>). In this regard, it is necessary to take into account that our blood samples were obtained immediately after birth, with the piglets still apnea (&lt;10 seconds postpartum).</p>
				<p>It is widely accepted that a significant drop in glucose during labor demonstrates how quickly the stores of this energy substrate are depleted. At this point, the fetus (and later the neonate) needs to maintain normoglycemia through anaerobio glycolysis, due to its hypoxic State (<xref ref-type="bibr" rid="B7">Martz et al., 2017</xref>); therefore, the immature neonatal brain, compared to a mature adult brain, is relatively more resistant to injuries caused by hypoglycemia (glucose &lt;40 mg/dL). All this coping with the alteration by decreasing brain energy requirements, increasing the blood flow at the brain level and the mobilization of glucose; consequently improving the ability to use lactate as an alternative energy source (<xref ref-type="bibr" rid="B1">Basu et al., 2009</xref>).</p>
				<p>The results of this report indicate that among the three blood sampling sites for the physiometabolic evaluation of neonatal piglets, the main difference lies in the dynamics of blood gases, due to a normal physiological process. Another considerable aspect is the methodological approach used, where taking blood samples from UC turns out to be the only non-invasive procedure in newborn pigs, with the limitation of being able to obtain mixed blood (arterial and venous), compared to ROS and VC. Both can confirm a venous sample, but not the welfare of the animals , if untrained personnel perform the sampling. In the same way, both ROS and VC can provide significantly elevated and decreased values respectively in case of requiring a metabolic diagnosis of the neonate, based on glucose and lactate, so their use should be determined according to the needs of the research, since they would not be fully functional in assessing the respiratory capacities of newborns. However, and regardless of the sampling site, the correct diagnosis of intrapartum asphyxia necessarily requires compliance with the criteria of hypercapnia, acidosis and hypoxia, to be considered as a useful tool in production.</p>
			</sec>
			<sec sec-type="conclusions">
				<title>CONCLUSION</title>
				<p>In order to determine the ideal blood-sampling site for the diagnosis of intrapartum asphyxia, it can be concluded that the umbilical cord values were more reliable for the diagnosis of gas exchange during asphyxia. All this, it is due to their similarity with the physiological parameters of a healthy neonate (pCO<sub>2</sub> = 36.10 ± 2.03, pO<sub>2</sub> = 32.68 ± 3.03); while for the metabolic profile, the retro-orbital sinus values were more accurate in determining glycemia and lactate.</p>
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				<fn fn-type="other" id="fn2">
					<label>2</label>
					<p>Code: 2020-21.</p>
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